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我們以貼壁細(xì)胞培養(yǎng)為例：
1、穿好細(xì)胞房專用的實(shí)驗(yàn)服，戴好滅菌手套和口罩。
2、從培養(yǎng)箱中取出細(xì)胞培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿（Tip1：一般選擇處于對(duì)數(shù)期的細(xì)胞），用75%酒精消毒外包裝后轉(zhuǎn)移至到超凈臺(tái)中。
3、打開蓋子（Tip2：如果是培養(yǎng)皿，只需打開一個(gè)縫隙即可，避免污染），輕輕吸出舊的培養(yǎng)液，加入適量PBS緩沖液洗滌1-2次（Tip3：注意從未培養(yǎng)細(xì)胞的側(cè)壁加入，以免沖掉細(xì)胞），棄去PBS緩沖液。
4、用移液器加入適量胰酶（Tip4：具體量根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要確定，提前將胰酶37℃預(yù)熱，效果更好），蓋好蓋子，“十字"晃動(dòng)，使胰酶充分接觸細(xì)胞。
5、將加入胰酶的細(xì)胞培養(yǎng)瓶轉(zhuǎn)移到倒置顯微鏡載物臺(tái)，鏡下觀察細(xì)胞消化情況，當(dāng)細(xì)胞變圓且大量脫落時(shí)，準(zhǔn)備終止消化（Tip5：若初始的細(xì)胞密度比較高，加入胰酶后，肉眼也可觀察到細(xì)胞脫落，當(dāng)細(xì)胞有一半左右脫落時(shí)，即可終止消化，避免反復(fù)將培養(yǎng)皿拿出超凈臺(tái)，避免增加污染的風(fēng)險(xiǎn)），用75%的酒精噴灑培養(yǎng)瓶表面，轉(zhuǎn)移到超凈臺(tái)。
6、用移液器加入等量含血清培養(yǎng)基，終止消化。移液器充分且柔和地吹打，避免產(chǎn)生氣泡，使細(xì)胞*脫落。
7、將培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中混合液體轉(zhuǎn)移至離心管中（離心管規(guī)格根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要確定），配平后離心3-5分鐘左右（離心機(jī)轉(zhuǎn)速根據(jù)細(xì)胞種類而定，常見的有1000-3000rpm/min）。
8、離心好后，用酒精噴壺噴灑離心管表面，轉(zhuǎn)移進(jìn)超凈臺(tái)，打開蓋子，將上清液倒入廢液缸。
9、加入適量體積含血清培養(yǎng)基，用移液器或巴氏吸管輕輕吹打，制成細(xì)胞懸液。
10、將細(xì)胞懸液分裝進(jìn)2個(gè)（或多個(gè)）潔凈滅菌培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中，加入適量培養(yǎng)基，蓋好蓋子。
11、將分裝好的培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡載物臺(tái)，觀察細(xì)胞情況，細(xì)胞應(yīng)保證一定數(shù)量，數(shù)量太少會(huì)影響生長情況。
12、在培養(yǎng)瓶上做標(biāo)記，注明傳代時(shí)間，細(xì)胞種類，操作人員等信息。在放入培養(yǎng)箱之前應(yīng)再次用酒精噴一噴培養(yǎng)瓶表面，然后應(yīng)記得整理操作臺(tái)，用75%酒精擦拭超凈臺(tái)臺(tái)面，清理廢液和垃圾。
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當(dāng)前位置：