今天來給大家介紹細胞培養實驗中，血清解凍的正確方法。

首先，剛拿到的血清，為保證血清中各種細胞因子的活性，應趕緊放進-20℃冰箱中，避免反復凍融。

當需要使用血清時，從-20℃冰箱中取出后，許多人會采用直接在4℃冰箱里過夜融化的方法，但在實際操作中，很多人會碰上血清出現沉淀或者由于血清中因子活性發生波動，而導致細胞培養發生波動等各種問題。

關于沉淀析出的原理：

我們都知道，在血清是含有多種大小分子蛋白以及水的混合物。當血清融化時，各種成分融化的速度會非常不同：蛋白質等干物質會先融化，水這類溶劑會相對滯后地融化。因此，在血清融化后半程，我們經常會看到，在瓶子中間剩下一根白色或無色的冰柱，這說明大量蛋白已融化，而水還沒化完，此時大量蛋白溶于少量的水，沉積在瓶子的底部，有的蛋白質就會飽和析出，呈現上黃下紅的分層渾濁液的狀態，而一旦析出，有的蛋白就很難再溶解回去

在使用過程中很容易引起沉淀、混合不均勻、局部濃度過高等問題，影響細胞生長。

更重要的一點是，血清中珍貴的生長因子等活性物質，它們在解凍過程中，有著與細胞復蘇類似的經歷，都需要快速解凍才能較大程度地保留生物活性。顯然，4℃過夜這樣的長時間處理，很易導致一部分「營養成分」的損失，影響細胞生長。

所以，為了更好地保留血清中的活性成分，使細胞培養更穩定，國際上一直推薦使用三步法融化，可最大限度減少沉淀出現，保留血清中因子的活性。具體方法見下表，有需要的同學可以截圖保存。

要點一：此三步融化法，適用于所有血清，在水浴過程中，血清的平面要盡量*浸在水中，但瓶口不要沒入水中，防治瓶口污染。在融化過程中要最好經常慢慢搖動瓶身，使血清混勻，但搖動不要劇烈，盡量不要產生泡沫！

要點二：如果你的血清平時是儲存在-80℃的血清，融化前則需提前幾天先轉移至-20℃冰箱中復溫（至少24小時），再使用三步法溶解，避免溫差過大，更易導致血清中蛋白凝集。

要點三：為最大限度保留血清中因子的活性，減少凍融次數，血清應遵循現用現配，現配現解凍的原則。*解凍的血清，應根據實驗需求，將其分裝，保證每一份夠一次使用量即可，比如：25ml/管、50ml/管等。分裝好的血清，密封好后，立即放回-20℃冰箱繼續冷凍儲存。需要配制培養基的時候，再從-20℃冰箱中取出一管來盡快解凍使用（最好能全部配成培養基，不要有剩余），配好的培養基在4℃冰箱儲存最好不超過一周。

好血清，正確用，以市面上*好用的Ausbian品牌進口血清為例，十幾年來的好口碑，與十幾年不遺余力地推廣血清的正確使用方法是分不開的。

選對好血清，會讓細胞養得好，用對正確的方法，會讓次次細胞都養得好！

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